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WS/T 419—2013 參考物質中酶活性濃度的賦值

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目錄

1 拼音

WS/T 419—2013 cān kǎo wù zhì zhōng méi huó xìng nóng dù de fù zhí

2 英文參考

The values of enzymatic activity concentrations assigned for the reference materials

ICS 11.020 C 50

中華人民共和國衛生行業標準 WS/T 419—2013參考物質酶活性濃度的賦值》(The values of enzymatic activity concentrations assigned   for the reference materials)由中華人民共和國國家衛生和計劃生育委員會于2013年07月16日發布,自2013年12月01日起實施。

3 前言

本標準按照GB/T 1.1—2009繪出的規則起草。

本標準起草單位:衛生部臨床檢驗中心、北京航天總醫院、清華長三角研究院、衛生部北京醫院。

本標準主要起草人:楊振華、陳文祥、申子喻、陳寶榮、譚愛國、王治國、零曉鵬、張傳寶、汪靜、胡衛江。

4 引言

酶活性濃度測量臨床實驗室重要工作之一,可為臨床醫師患者提供大量有價值的診斷信息,也是臨床化學的重要工作。根據《醫療機構臨床實驗室管理辦法》(以下簡稱《管理辦法》)的要求,臨床實驗室所用的方法、儀器等應能保證測量結果的準確可靠。臨床實驗室應對所用的各項測量結果進行溯源,以保證測量結果準確。

根據酶活性濃度測量的特性,不能用天平稱重法直接稱量酶的活性,只能通過測量酶催化的化學反應速度變化間接求得酶活性,但化學反應速度又與測量環境、條件如反應溫度、反應物濃度等密切相關。因此,酶參考物質的值只能溯源到參考方法而非一級參考物質。本文件中的參考物質是指各級參考物質、校準品和質控品。根據IS018153要求,在給酶參考物質賦值時,為避免不同條件對賦值結果的影響,通常由多個參考實驗室采用同一種國際或國家公認的參考方法進行測量,最后經統計學方法分析得出酶參考物質的賦值和其不確定度。這符合ISO指南34中介紹的給參考物質賦值的方法之一,由參考實驗室網絡取得的數學均值作為酶參考物質的賦值。

為盡可能避免不同參考實驗室測量結果的不一致,各參考實驗室應能溯源至同一國際(國家)酶參考物質。在我國,參加酶學參考實驗室網絡的實驗室應有文件證明能溯源至歐共體制備的歐洲參考物質(ERM)或其他國家制備的一級標準物質,并有文件證實測量每一步驟嚴格遵循檢驗醫學溯源聯合委員會(JCTLM)認定的國際參考方法。網絡實驗室的組織者應選擇此類實驗室為酶參考物質賦值。   作為測量的參考物質,不論是國際級或國家級的參考物質,還是廠家的產品校準品,都應能溯源至相應的參考方法。早在20世紀80年代,國際上就開始用實驗室網絡對參考物質中酶活性濃度進行賦值和評定其不確定度。在20世紀90年代后期,我國有實驗室研制并申報國家酶活性濃度測量參考物質,但至今我國尚無此類標準,本標準依據ISO指南35和其他國際標準并結合我國臨床實驗室現狀起草。

參考物質中酶活性濃度的賦值

5 1 范圍

本標準規定了使用參考實驗室網絡對參考物質中酶活性濃度進行賦值和評定其不確定度時應遵循的方法和步驟。

本標準適用于通過參考實驗室網絡對參考物質中酶活性濃度進行賦值和評定其不確定度。鼓勵臨床實驗室采用按照此標準賦值的酶活性濃度參考物質,核查本實驗室常規檢驗項目的溯源性和正確度。   本標準不適用于單個參考實驗室對所測量結果的不確定度進行評定。

6 2 規范性引用文件

下列文件對本文件的應用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。

JJG 1006—1994一級標準物質計量技術規范

標準物質管理辦法 國家計量局 1987

7 3 術語和定義

下列術語和定義適用于本文件。

3.1

參考物質 reference material;RM

標準物質

具有足夠均勻和穩定的特定特性的物質,其特性被證實適用于測量中或標稱特性檢查中的預期用途。

注1:標稱特性的檢查提供一個標稱特性值及其不確定度。該不確定度不是測量不確定度

注2:賦值或未賦值得標準物質都可用于測量精密度控制,只有賦值的標準物質才可用于校準測量正確度控制。

注3:“標準物質”既包括具有量的物質,也包括具有標稱特性的物質。

示例1:具有量的標準物質舉例:

a) 給出了純度的水,其動力學黏度用于校準粘度計;

b) 含膽固醇但沒有其物質的量濃度賦值的人血清,僅用作測量精密度控制;

c) 闡明了所含二惡英的質量分數的魚尾形紙巾,用作校準物。

示例2:具有標稱特性的標準物質舉例:

a)一種或多種指定顏色的色圖;

b)含有特定的核酸序列的DNA化合物

c) 含有19-雄(甾)二酮的尿。

注4:標準物質有時與特制裝置是一體化的。

示例1:三相點瓶中已知三相點的物質。

示例2:置于透射濾光器支架上已知光密度玻璃

示例3:安放在顯微鏡載玻片上尺寸一致的小球

注5:有些標準物質量值溯源到SI制外的某個測量單位。這類物質包括量值溯源到由世界衛生組織指定的國際單位(IU)的疫苗

注6:在某個特定測量中,所給定的標準物質只能用于校準或質量保證兩者中的一種用途。

注7:對標準物質的說明應包括該物質的追溯性,指明某來源和加工過程。

注8:國際標準化組織/標準物質委員會有類似定義,但采用術語“測量過程”意指“檢查”,它既包含了量的測量,也包含了標稱特性的檢查。

[JJF 1001—2011,8.14]

3.2

有證標準物質 certified reference material;CRM

附有由權威機構發布的文件,提供使用有效程序獲得的具有不確定度和溯源性的一個或多個特性量值的標準物質。

示例:在所附證書中,給出膽固醇濃度賦值及其測量不確定度的人體血清,用作校準器或測量正確度控制的物質。

注1:“文件”是以“證書”的形式給出(見1SO指南31:2000)。

注2:有證標準物質制備和頒發證書的程序是有規定的(例如ISO指南34和ISO指南35)。

注3:在定義中,“不確定度”包含了測量不確定度和標稱特性值得不確定度兩個含義,這樣做是為了一致和連貫。

“溯源性”既包含量值的計量溯源性,也包含標稱特性值得追溯性。

注4:“有證標準物質”的特定量值要求附有測量不確定度的計量溯源性。

[JJF 1001—20ll,8.15]

3.3

(參考物質或有證參考物質)適用期 shelf time(of a RM/CRM)

參考物質或有證參考物質生產者保證其穩定性的時間區間。

注:同ISO指南31,使用期等于證書有效的期限。

[ISO指南35,3.13]

3.4

(參考物質)使用期 life time(of a RM)

參考物質可能使用的時間區間。

[ISO指南35,3.12]

3.5

測量程序 measurement procedure

根據一種或多種測量原理及給定的測量方法.在測量模型和獲得測量結果所需計算的基礎上,對測量所做的詳細描述。

注1:測量程序通常要寫成充分而詳盡的文件,以便操作者能進行測量。

注2:測量程序可包括有關目標測量不確定度的陳述。

注3:測量程序有時被稱作標準操作程序,縮寫為SOP。

注4:參考測量程序(reference measurement procedure)【VIM 2.7】是在校準或表征標準物質時為提供測量結果所采用的測量程序,它適用于評定由同類量的其他測量程序獲得的被測量量值的測量正確度。

注5:原級參考測量程序(primary reference measurement procedure)或原級參考程序(primary reference procedure)【VIM 2.8】是用于獲得與同類量測量標準沒有關系的測量結果所用的參考測量程序。物質的量咨詢委員會——化學計量(CCQM)對于這個概念使用術語“原級測量方法”。兩個下級概念的術語“直接原級測量程序”和“比例原級參考測量程序”的定義由CCGM給出(第五次大會,1999)。

示例:測量在20℃時從50 mL吸液管放出的水量,對由吸液管流到杯中的水稱重,取加水后杯子的質量減去起始空杯的質量,并按實際水溫對質量差進行修正.用體積質量(質量密度)得到被測的水量。

[JJF 1001—2011,4.6]

3.6

測量方法 method of measurement

對測量過程中使用的操作所給出邏輯性安排的一般性描述。

注:測量方法可用不同方式表述,如替代測量法、微差測量法,零位測量法、直接測量法、間接測量法。

[JJF 1001—2011,4.5]

3.7

參考測量程序 reference measurement procedure

是在校準或表征標準物質時為提供測量結果所采用的測量程序,它適用于評定由同類量的其他測量程序獲得的被測量量值的測量正確度。

[JJF 1001—2011,4.6注4]

3.8

原級參考測量程序 primary reference measurement procedure

原級參考程序 primary reference procedure

是用于獲得與同類量測量標準沒有關系的測量結果所用的參考測量程序。物質的量咨詢委員會——化學計量cccoM)對于這個概念使用術語“原級測量方法”。兩個下級概念的術語“直接原級測量程序”和“比例原級參考測量程序”的定義由CCGM給出(第五次大會,1999)。

[JJF 1001-2011,4.6注5]

3.9

校準 calibration

在規定條件下的一組操作,其第一步是確定由測量標準提供的量值與相應示值之間的關系,第二步則是用此信息確定由示值獲得測量結果的關系,這里測量標準提供的量值與相應示值都具有測量不確定度。

注1:校準可以用文字說明、校準函數、校準圖、校準曲線或校準表格的形式表示。某些情況下,可以包含示值的具有測量不確定度的修正值或修正因子。

注2:校準不應與測量系統的調整(常被錯誤稱作“自校準”)相混淆,也不應與校準的驗證相混淆。   注3:通常,只把上述定義中的第一步認為是校準。

[JJF 1001—2011,4.10]

3.10

基質 matrix

一個物質系統除分析物以外的所有成分。

[IS015194,3.3]

3.11

基質效應 matrix effect

用特定測量程序測量被測量,被測量以外的樣品特性對測量的影響以及由此引起的對測量值的影響。

注1:一個明確的基質效應原因是一個影響量

注2:“基質效應”有時被錯誤地用于表示缺乏互換性,后者由變性的分析物或加入的用于模擬分析物的非真正成分(代用分析物)引起。

[ISO 15194,3.4]

3.12

基質物質 matrix material

自然、工業產品或其他取樣的物質。

示例:土壤、水、空氣。

[ISO指南35,3.8]

3.13

物質的互換性 commutability of a material

用兩種某特定量的測量程序測量某給定物質所得測量結果的數字關系,與用這些程序測量常規樣品結果的數字關系的一致程度。

[IS015194,3.5]

3.14

瓶間均勻性 between-bottle homogeneity

參考物質在瓶間特性的差異。

注:“瓶間均勻性”還隱含用于其他類型的包裝(例如安瓿)以及其他物理樣式和檢測部塊。

[ISO指南35,3.5]

3.15

長期穩定性 long-term stability

參考物質生產者在特定貯存條件下參考物質特性的穩定性。

[ISO指南35,3.11]

3.16

短期穩定性 short-term stability

在特定運輸條件下運送時,參考物質特性的穩定性。

[ISO指南35,3.10]

3.17

測量精密度 precision of measurements

精密度 precision

在規定條件下,對同一或類似被測對象重復測量所得示值或測得值間的一致程度。

注1:測量精密度通常用不精密程度以數字形式表示,如在規定測量條件下的標準偏差、方差或變差系數。

注2:規定條件可以是重復性測量條件期間精密度測量條件或復現性測量條件

注3:測量精密度用于定義測量重復性期間測量精密度測量復現性

注4:術語“測量精密度”有時用于指“測量準確度”,這是錯誤的。

[JJF 1001—2011,5.10]

3.18

測量不確定度 uncertainty of measurement

不確定度 uncertainty

根據所用到的信息.表征賦予被測量量值分散性的非負參數。

注1:測量不確定度包括由系統影響引起的分量,如與修正量和測量標準所賦量值有關的分量及定義的不確定度

有時對估計的系統影響未作修正,而是當作不確定度分量處理。

注2:此參數可以是諸如稱為標準不確定度的標準偏差(或其特定倍數).或是說明了包含概率的區間半寬度。

注3:測量不確定度一般由若干分量組成。其中一些分量可根據一系列測量值的統計分布,按測量不確定度的A類評定進行評定,并可用標準差表征。而另一些分量則可根據基于經驗或其他信息所獲得的概率密度函數,按測量不確定度的B類評定進行評定,也用標準偏差表示。

注4:通常,對于一組給定的信息,測量不確定度是相應于所賦予被測量的值的。該值的改變將導致相應的不確定度的改變。

注5:本定義是按2008版VIM給出的。而在GUM中的定義是:表征合理地賦予被測量之值的分散性,與測量結果相聯系的參數。

[JJF 1001—2011.5.18]

3.19

賦值 value assignment

全稱酶活性濃度參考物質的特性鑒定 characterization

酶活性濃度參考物質的特性就是該物質中酶活性濃度的量值。對其特性的鑒定(characterization)過程實際上就是對酶RM賦予酶活性濃度的量值,在本文件中,特性的鑒定常簡稱為賦值。

[ISO指南35,3.4]

8 4 符號

下列符號適用于本文件。

MS:均方(方差分析)。

Sbb:瓶間均勻性的標準差。

Slts:長期穩定性的標準差。

Sr重復性標準差。

Ssts:短期穩定性的標準差。

SS:平方和。

uCRM:有證參考物質賦值的合成標準不確定度

UCRM:有證參考物質賦值的擴展不確定度

uchar定值的標準不確定度。

Ubb:由瓶間均勻性引入的標準不確定度。

Ults:由長期穩定性引入的標準不確定度。

Usts:由短期穩定性引入的標準不確定度。

9 5 對參考物質中酶活性濃度賦值的一般過程

9.1 5.1 賦值參考實驗室網絡的組織和合作

9.1.1 5.1.1 參考實驗室網絡組織者的認定

通過參考實驗室網絡對參考物質中酶活性濃度賦值首先涉及到賦值參考實驗室網絡的組織和合作。組織者應由有資質、有權威的校準(參考)實驗室承擔。該實驗室應通過中國合格評定國家認可委員會(CNAS)醫學參考測量實驗室認可并在衛生系統具有較高的學術水平。

9.1.2 5.1.2 參考實驗室網絡組織者的職責

5.1.2.1 制定對參考物質賦值和評定其不確定度的實施方案,組織對方案的實施。5.1.2.2 對從參加網絡實驗室得到的大量數據,按制定好的方案進行統計和計算。5.1.2.3 當完成參考物質賦值和評定其不確定度后,將結果提交國家認定的發證機構評審,最后成為有證參考物質(CRM)。

9.1.3 5.1.3 組織者選擇和認定參加賦值工作的實驗室

組織者應選擇參加賦值工作的參考實驗室,其資質原則上應通過中國合格評定國家認可委員會(CNAS)醫學參考測量實驗室認可,也可由組織者確認并報相關單位批準。

9.1.4 5.1.4 參考物質中酶活性濃度賦值方案的制定

5.1.4.1 賦值方案由組織者制定并經參與者討論。

5.1.4.2 制定方案應重點考慮以下內容:

——進一步確認待賦值參考物質的定義與特性,內容包括:參考物質擬申報等級、基質、簡單制備過   程、特性(酶活性濃度量值)、期望賦值和賦值不確定度能達到的水平及其他相關研究資料等;   ——待賦值參考物質的運輸和包裝方法的設計;

——需要時進行可行性研究(非必需);

——樣品制備程序和抽樣的設計;

——用于參考物質賦值的測量方法的選擇和程序的設計;

——均勻性實驗的設計;

——穩定性實驗的設計;

——實驗室網絡為參考物質定值實驗的設計;

——參考物質賦值不確定度評定方法的設計;

——報告方式與格式的設計。如申請國家發證,按國家規定書寫報告。

9.1.5 5.1.5 參考物質中酶活性濃度賦值方案的實施

參考物質中酶活性濃度賦值方案的實施推薦按以下順序進行:

a) 測量樣品抽樣;

b) 均勻性實驗;

c) 穩定性實驗;

d) 參考實驗室網絡對酶參考物質定值。

9.1.6 5.1.6 賦值數據的處理

由組織者指定實驗室按方案對實驗數據進行統計和計算,給出參考物質中酶活性濃度賦值和不確定度。

9.2 5.2 賦值報告

由組織者指定實驗室完成賦值報告。

10 6 賦值

10.1 6.1 運輸

6.1.1 運輸時的包裝與方法:應選擇適宜的包裝材料和方法,并按國家規定和要求進行包裝、標記和運輸,避免引發生物安全問題。

6.1.2 運輸周期:應滿足酶學測量要求。

6.1.3 運輸條件:可選擇常溫、冰袋或干冰保存等條件。還應注意運輸時紫外線、其他光線及濕度的影響。

6.1.4 運輸方式:可選擇直接送貨、郵寄、快運、空運等方式。應選擇可靠有信譽的運輸公司。

10.2 6.2 可行性研究

10.2.1 6.2.1 研究的可行性確認

在進行賦值前應確定是否需進行大規模賦值工作,包括對參考物質的均勻性、穩定性和互換性等基本特性的研究。若參考物質的均勻性和穩定性不滿足《標準物質管理辦法》中對申報參考物質基本條件的規定或缺乏互換性,就應考慮是否有必要進行大規模賦值工作。

10.2.2 6.2.2 研究中應考慮的問題

10.2.2.1 6.2.2.1 參考物質中酶的來源

6.2.2.1.1 最佳來源

近年來提倡使用基因工程技術從人細胞中獲得各種酶制品,用此類酶制品制備的參考物質易于保證不同批號產品的一致性,還可能有較好的互換性。

6.2.2.1.2 推薦來源

將從動物組織中提純的酶制品加入適當的基質中得到酶參考物質。這種方法比較簡單,但所加入動物組織酶的特性,如米氏常數、最適反應條件等往往與臨床測量人樣品中的酶不完全相同,用此法制備的酶參考物質常缺乏互換性。

10.2.2.2 6.2.2.2 酶參考物質的基質

宜采用人來源的體液。但人來源的體液獲取途徑有限,不能廣泛應用。考慮到牛血白蛋白人血清白蛋白結構類似,所以可用牛血清白蛋白溶液代替人來源的體液使用。

10.2.2.3 6.2.2.3 制備原料

酶制品,非酶純品。

10.2.2.4 6.2.2.4 制備方法

將酶制品配成溶液作為酶學測量的二級參考物質,用公認的參考方法進行測量和賦值。

注:在酶活性濃度測量中,目前不可能用酶純品通過經典的稱重法去定量,制成一級參考物質。

10.3 6.3 酶參考物質的準備

10.3.1 6.3.1 酶參考物質的適用期和使用期

10.3.1.1 6.3.1.1 生產者的聲稱

通常適用期應短于使用期。

10.3.1.2 6.3.1.2 期望適用期

期望適用期至少1年~2年。

10.3.1.3 6.3.1.3 延長有效期的方法

6.3.1.3.1 減少水分含量,如:真空冷凍干燥。但應注意過分干燥時,少數樣品可能更不穩定。

6.3.1.3.2 滅菌或添加抗生素防止微生物生長

6.3.1.3.3 -70℃以下低溫冷凍保存。

6.3.1.3.4 使用穩定劑。由于穩定劑可能會改變酶特性,或者產生基質效應,應盡量不使用。但某些特殊情況下須使用穩定劑才能達到要求時,可考慮添加少量穩定劑。

10.3.2 6.3.2 賦值所需參考物質的量

準備足夠量的酶參考物質樣品,包括如下幾項:

——可行性實驗所需樣品量;

——均勻性實驗所需樣品量;

——穩定性實驗所需樣品量(包括適用期頻繁監測所需樣品量);

——參考實驗室網絡聯合定值所需樣品量。

10.4 6.4 測量方法的選擇

10.4.1 6.4.1 均勻性實驗

6.4.1.1 最佳方法:JCTLM或國家批準的參考方法。

6.4.1.2 推薦方法:自動生化分析儀上使用根據參考方法建立的具有良好精密度的常規方法。

10.4.2 6.4.2 穩定性實驗

6.4.2.1 最佳方法:JCTLM或國家批準的參考方法。

6.4.2.2 推薦方法:自動生化分析儀上使用根據參考方法建立的具有良好精密度的常規方法。

10.4.3 6.4.3 網絡聯合定值實驗

6.4.3.1 定值方法

JCTLM或國家批準的參考方法。

6.4.3.2 各實驗室測量結果的溯源性保證

6.4.3.2.1 所有儀器須經過檢定/校準合格。

6.4.3.2.2 賦值項目須參加國際或國家實驗室室間能力比對活動并合格。

10.5 6.5 均勻性實驗

10.5.1 6.5.1 設計

6.5.1.1 預期目標:應根據酶參考物質定義中的參考物質級別確立瓶間變異系數的允許變異范圍。一般情況下酶參考物質的瓶間變異系數(CV)應≤0.5%。廠家的產品校準品瓶間CV應≤1.0%,商品質控品瓶間CV應≤2.0%。

6.5.1.2 應進行均勻性實驗的參考物質類型:固態參考物質、液態參考物質。

6.5.1.3 實驗室數量:一個或幾個實驗室。

6.5.1.4 進行均勻性實驗的方法的選擇:能滿足預期要求的精密度良好的測量方法。不要將測量方法引起的不確定度估計過低,特別是當只能使用精密度較差的方法時。

6.5.1.5 抽樣方式、抽樣量與測量次數:應按JJG 1006—1994的規定進行抽樣。每瓶測量次數應不少于2次。

6.5.1.6 均勻性實驗模式常用的均勻性實驗模式見圖1。

均勻性實驗模式常用的均勻性實驗模式

圖1 參考物質均勻性實驗模式

6.5.1.7 均勻性實驗數據有效性檢驗基本公式見式(1)。

xiy= u + Ai+ εiy

式中:

xiy——均勻性實驗的每個測量值;

u——所有xiy的數學均值(每瓶均值的均值),如果測量無偏移,則此值即為真值

Ai——瓶間均勻性引起的誤差,其方差即瓶間變異;

εiy——偶然誤差,其方差即重復性變異;

i=1…a ——抽樣瓶序數;

j=1……ni為測量次數的序數。

一般認為瓶間均勻性和測量重復性之間不存在相互影響,它們的誤差是獨立的。并假設Ai值是正態分布,其均值為零,方差為σz2;ε值也是正態分布,其均值為零,方差為σ2

6.5.1.8 瓶間均勻性計算公式見式(2)。

捕獲.PNG

式中:

Sbb——瓶間均勻性的標準差;

MSamong——組間方差;

MSwithin——組內方差;

n0——每瓶測量次數。

10.5.2 6.5.2 檢驗方法

10.5.2.1 6.5.2.1 抽樣

6.5.2.1.1 抽樣原則

應保證抽樣有代表性。

6.5.2.1.2 抽樣方法

6.5.2.1.2.1 抽樣方法包括:隨機、分層隨機或系統抽樣。

6.5.2.1.2.2 實際使用最多的抽樣方法:隨機和分層隨機方法。

6.5.2.1.2.3 推薦使用的抽樣方法:分層隨機方法,能保證所采的樣本均勻分布在整個批量中。

6.5.2.1.3 抽樣量

6.5.2.1.3.1 計算抽樣量時應考慮的因素:

a) 該批參考物質的分裝瓶數;

b) 期望達到的批間不確定度;

c) 所用測量方法的精密度大小

6.5.2.1.3.2 抽樣量應遵循JJG 1006—1994的規定,包括以下兩種情況:

a) 當樣本總量少于500瓶時,抽樣量不少于15瓶;當樣本總量大于500瓶時,抽樣量不少于25瓶。

b)對于均勻性好的樣品,當樣本總量少于500瓶時,抽樣量不少于10瓶;當樣本總量大于500瓶時,抽樣量不少于15瓶。

10.5.2.2 6.5.2.2 測量

6.5.2.2.1 測量周期

應在一天一個批次內完成。

6.5.2.2.2 測量方法

6.5.2.2.2.1 最佳方法:JCTLM或國家批準的參考方法。

6.5.2.2.2.2 推薦方法:自動生化分析儀上使用根據參考方法建立的具有良好精密度的常規方法。

6.5.2.2.3 校準方法

使用自動生化分析儀測量時應在測量前根據廠家說明書規定的方法進行校準。

6.5.2.2.4 室內質控

樣本測量前后應分別進行室內質控樣本測量。如出現室內質控失控或其他操作問題,則應將此批次數據棄去,另加一個批次測量。

6.5.2.2.5 樣本測量次數

每瓶樣本至少重復測量2次。

6.5.2.2.6 樣本測量順序

為避免在測量過程中出現傾向性誤差,有效辦法是隨機測量,而不是按順序對同一樣本重復測量2~3次。若抽樣量為20瓶,宜按以下順序測量2~3次:

——第一次測量:1-3-5-7-9-11-13-15-17-19-2-4-6-8-10-12-14-16-18-20; ——第二次測量:20-19-18-17-16-15-14-13-12-11-10-9-8-7-6-0-4-3-2-1; ——第三次測量:2-4-6-8-10-12-14-16-18-20-1-3-5-7-9-11-13-15-17-19。 注:如果能證明所使用的自動生化分析儀在同一批次測量的短時間內不存在傾向性變化,也可以順序對抽樣樣本進行2或3次測量。

6.5.2.2.7 測量結果的質量保證

6.5.2.2.7.1 分析批前后質控數據在控。

6.5.2.2.7.2 測量時樣本量偏小會影響測量精密度,此時按比例同時加大樣本和試劑用量,可明顯提高測量的精密度。

10.5.2.3 6.5.2.3 數據處理

6.5.2.3.1 測量數據有效性判斷

6.5.2.3.1.1 實驗批質控數據確認:按室內質控規則評價數據有效性。

6.5.2.3.1.2 離群值判斷標準:每瓶單次測量數據超出總均值±45D。

6.5.2.3.1.3 數據剔除量:小于總測量數據量的5%。

6.5.2.3.1.4 如果用分層隨機抽樣法,將實驗數據按抽樣前后排列,發現有傾向性變化,往往說明在分裝過程有問題。

6.5.2.3.2 有效數據處理(實例參見附錄A)

6.5.2.3.2.1 將有效數據填入表1。

表1 瓶間均勻性實驗測量數據

瓶號

結果1

U/L

結果2

U/L

結果3

U/L

6.5.2.3.2.2 對表1數據進行計算,求出每瓶2~3次測量的平均值、方差,見表2。

表2 每瓶測量結果的均值、方羞和測量次數

瓶號

均值

U/L

方差

測量次數

表2(續)

瓶號

均值

U/L

方差

測量次數

6.5.2.3.2.3 從表2計算出組間方差MSamong、組內方差MSwithin,見表3。

表3 瓶間均勻性實驗的ANOVA表

變異來源

SS

自由度

MS

瓶間變異

瓶內變異

總變異

6.5.2.3.2.4 瓶間均勻性的標準差(Sbb)和重復性標準差(Sr)的計算。

按公式(2)計算Sbb

捕獲.PNG

按公式(3)計算Sr

捕獲.PNG

式中:

Sr——重復性標準差;

MSwithin——組內方差。

6.5.2.3.2.5 由瓶間均勻性引入的標準不確定度(Ubb):如所選用測量方法有良好的批內精密度,例如變異系數≤1.0%.就不需對上述數據進行修正,此時按公式(4)計算。

ubb=Sbb   ………(4)

式中:

ubb——由瓶間均勻性引入的標準不確定度;

Sbb——瓶間均勻性的標準差。

注:由于酶參考物質多以真溶液狀態存在或在此基礎上除去水分以凍干形式保存,一般不存在瓶內不均勻性的 問題。

但要注意某些情況下,例如融凍后,如果混勻不充分時,會出現瓶內分布的不均勻。

10.6 6.6 穩定性實驗

10.6.1 6.6.1 設計

10.6.1.1 6.6.1.1 目的

研究參考物質在制備后貯存在生產者規定條件下的穩定性,給使用者提供一個明確的使用該酶參考物質的期限。

10.6.1.2 6.6.1.2 內容

6.6.1.2.1 運輸條件(短期)穩定性實驗。

6.6.1.2.2 貯存條件(長期)穩定性實驗,分兩個階段進行,包括早期穩定性實驗和整個適用期穩定性的監測。

10.6.1.3 6.6.1.3 預期目標

6.6.1.3.1 短期穩定性

采用冷凍包裝、快遞運輸的情況下至少四天。以計劃運輸到達使用者時間的2~4倍計算,即4d~8d。應設計3~5個監測時間點。

6.6.1.3.2 長期穩定性

6.6.1.3.2.1 早期穩定性:根據《標準物質管理辦法》的規定,申報標準物質時穩定性要求為適用條件下貯存至少6個月。

6.6.1.3.2.2 整個適用期穩定性的監測:時間應覆蓋從標準物質生產到使用完畢。大多可持續24個月~36個月。應設計5~6個監測時間點。

10.6.1.4 6.6.1.4 實驗室數量

一個或幾個實驗室。

10.6.1.5 6.6.1.5 進行穩定性實驗的方法的選擇

能滿足預期要求的精密度良好的測量方法。不應將測量方法引起的不確定度估計過低,特別是當只能使用精密度較差的方法時。

10.6.1.6 6.6.1.6 實驗周期

6.6.1.6.1 短期穩定性實驗:至少4d,不少于3個監測點。

6.6.1.6.2 早期穩定性實驗:至少6個月,不少于4個監測點。

6.6.1.6.3 適用期穩定性的監測:從標準物質生產到用完為止,大多可持續24個月~36個月,不少于5個監測點。

10.6.1.7 6.6.1.7 測量間隔時間、抽樣方式、抽樣量與測量次數

應根據統計學原理進行。每個時間點至少取2瓶,每瓶至少重復3次。

10.6.1.8 6.6.1.8 穩定性實驗模式

6.6.1.8.1 短期穩定性實驗:推薦采用同步等時(isuchronous)穩定性實驗模式。

6.6.1.8.2 長期穩定性實驗要求如下:

a) 宜采用經典穩定性實驗模式;

b) 有條件的實驗室,例如,有液氮-150℃特定貯存條件的前提下可采用同步等時(isochronous)穩定性實驗模式。

注1:經典穩定性實驗模式:同一時期制備的同一批號參考物質貯存在生產者規定的相同條件下,經過不同時間后分別進行測量。雖由同一實驗室進行測量,但卻是在復現性、而不是在重復性條件下進行的,容易受到測量系統不穩定性的影響,導致不確定度較大。

注2:同步等時穩定性實驗模式:收集經歷不同變化時間的參考物質樣品,分別貯存在穩定的條件下,如-150℃。

待收集到最后一批參考物質樣品時,同時用精密度良好的方法測量所有收集到的不同時間的樣品。即所有測量在同一時間、同一批次、同一校準中進行,是在重復性條件下進行的。此法可有效地減少不同時間測量時數據的變異,不能及時測量的樣本應貯存在低溫,如-70℃或-150℃,以保證樣品的穩定。

注3:同步等時穩定性實驗模式的不確定度一般比經典穩定性實驗模式的不確定度小,保證穩定性實驗數據更具有“決定性”。但此法只適用于不同時間進行批量生產的酶參考物質,或者能保證在貯存條件下,酶參考物質不產生退變,例如在特定貯存條件(如液氮-150℃)下其退變速度明顯小于貯存條件(-70℃或4℃),否則需采用經典研究方法。

10.6.1.9 6.6.1.9 穩定性實驗數據有效性檢驗基本公式

穩定性試驗數據有效性檢驗基本公式見式(5)。

Y=β0iXi+ε   ……(5)

式中:

Y——參考物質貯存不同時期后的賦值;

β0——回歸方程式的截距;

βi——回歸方程式的斜率數;

Xi——時間;

ε——偶然誤差。

觀察數據是否有變化趨勢。一般都假設參考物質的變化是逐步地、緩慢地,所以對穩定性實驗數據進行線性分析。最后可通過F-test判斷變化趨勢是否有意義。

10.6.1.10 6.6.1.10 穩定性實驗的結果判讀

6.6.1.10.1 除已知有特定變化模式外,應采用線性方程式來判斷。

6.6.1.10.2 線性方程式的兩個重要參數:斜率和截距。

6.6.1.10.3 數據點:至少應有3~4點數據。若采用的變化函數有較多參數,則所采用的數據點也應更多。

10.6.1.11 6.6.1.11 穩定性計算

穩定性的計算見公式(6)。

捕獲.PNG

式中:

S(b)——斜率的不確定度;

S——直線上各點的標準差;

S(xx)——時間偏差的平方和。

10.6.2 6.6.2 早期穩定性實驗

10.6.2.1 6.6.2.1 抽樣

6.6.2.1.1 抽樣原則

參見6.5.2.1.1。

6.6.2.1.2 抽樣方法

參見6.5.2.1.2。

6.6.2.1.3 抽樣量

6.6.2.1.3.1 計算抽樣量時應考慮的因素:

——瓶間均勻性的標準差(Sbb)和重復性標準差(Sr);

——期望的不確定度;

——期望的貯存期;

——變化趨勢。

當Sbb<Sr時,測量的瓶數和每瓶測量次數都可以較少;

當Sbb≥Sr時,測量的瓶數和每瓶測量次數應增加;

當Sbb和Sr均較大時,不宜對酶參考物質穩定性的不確定度給出正確評定。

6.6.2.1.3.2 抽樣量的計算,每個時間點應不少于2瓶。

10.6.2.2 6.6.2.2 樣本預處理(同步等時穩定性實驗模式)

將樣本從生產者聲稱的貯存條件中取出,做好標記,放入特定貯存條件(如液氮-150℃)中貯存。

注:按經典穩定性實驗模式測量時不需進行樣本預處理,只是按監測時間點直接測量即可。

10.6.2.3 6.6.2.3 測量

6.6.2.3.1 測量周期

至少6個月。

6.6.2.3.2 測量頻數(時間點)

6.6.2.3.2.1 不少于4個監測點。

6.6.2.3.2.2 經典穩定性實驗模式:每月將樣本從貯存條件中取出,直接測量。

6.6.2.3.2.3 同步等時穩定性實驗模式:每月將樣本從貯存條件中取出,做好標記,放入特定貯存條件(如液氮-150℃)中保存,第6個月集中測量。

6.6.2.3.3 測量方法

6.6.2.3.3.1 最佳方法:JCTLM或國家批準的參考方法。

6.6.2.3.3.2 推薦方法:自動生化分析儀上使用根據參考方法建立的具有良好精密度的常規方法。6.6.2.3.4 校準方法

使用自動生化分析儀測量時應在測量前根據廠家說明書規定的方法進行校準。

6.6.2.3.5 室內質控

樣本測量前后應分別進行室內質控樣本測量。如出現室內質控失控或其他操作問題,則應將此批次數據棄去,另加一個批次測量。

6.6.2.3.6 樣本測量次數

每瓶樣本至少重復測量3次。

注:為盡早取得穩定性資料,可進行加速實驗。如可將貯存在4℃~8℃的冷凍干燥參考物質的貯存溫度升高,例如放在25℃或37℃,時間常為2月,根據一定公式計算出4℃~8℃的貯存期。但對在-70℃度貯存的液態酶參考物質,目前尚無行業認可的加速實驗的方法。

6.6.2.3.7 數據處理

6.6.2.3.8 測量數據有效性判斷

6.6.2.3.8.1 實驗批質控數據確認:按室內質控規則評價數據有效性。

6.6.2.3.8.2 離群值判斷標準:每瓶單次測量數據超出總均值±4SD

6.6.2.3.8.3 數據剔除量;小于總測量數據量的5%。

6.6.2.3.9 有效數據處理(實例參見附錄B)

6.6.2.3.9.1 將有效數據填入表4。

表4 早期穩定性實驗數據

時間

均值

U/L

0

1

2

3

4

5

6

6.6.2.3.9.2 數據分析:對穩定性實驗數據評估的第一步是觀察數據是否有變化趨勢。一般都假設參考物質的變化是逐步地、緩慢地,所以對穩定性實驗數據進行線性分析。最后可通過F-test判斷變化趨勢是否有意義。

公式(7)表述了穩定性實驗的基本模式。它設想參考物質貯存不同時期后,賦值Y變化應為:

Y=β0iXi+ε   ………(7)

式中:

Y——參考物質貯存不同時期后的賦值;

β0——回歸方程式的截距;

βi——回歸方程式的斜率;

Xi——時間;

ε——偶然誤差。

捕獲.PNG

6.6.2.3.9.3 按公式(8)計算斜率(b)。

式中:

xi——時間點;

yi——各時間點測量結果均值;

n——測量頻數(時間點);

Sxy——各時間點時間偏差與測量結果偏差乘積之和;

Sxx——時間偏差的平方和。

6.6.2.3.9.4 按公式(9)計算截距(a)。

捕獲.PNG

式中:

捕獲.PNG——時間的均值;

捕獲.PNG——各時間點測量結果均值的均值;

a——截距;

b——斜率。

6.6.2.3.9.5 按公式(10)計算直線上各點的標準差(S)。

捕獲.PNG

式中:

S——直線上各點的標準差;

xi——時間點;

yi——各時間點測量結果均值;

a——截距;

b——斜率;

n——測量頻數(時間點)。

6.6.2.3.9.6 按公式(11)計算斜率的不確定度[S(b)]。

捕獲.PNG

式中:

S(b)——斜率的不確定度;

S——直線上各點的標準差;

Sxx——時間偏差的平方和。

6.6.2.3.10 結果判斷

6.6.2.3.10.1 若|b|<t(0.05,n-2)×S(b),可判斷斜率穩定。

6.6.2.3.10.2 若|b|≥t(0.05,n-2)×S(b),可判斷斜率不穩定。

注1:t(0.05,n-2)從統計學書籍中查得。

注2:根據所期望酶參考物質賦值的不確定度、所希望的適用期以及在此期間的變化趨勢確定是否繼續申請發證。

注3:通過早期穩定性實驗,可初步判斷此酶參考物質是否穩定,是否已可用于實際溯源工作。

注4:只有當測量方法的精密度很好以及瓶間變異較小時,其結果才是有意義的。可以將測量方法的精密度結果與均勻性實驗以及參考物質賦值不確定度進行比較。當瓶間不均勻性較大,如sbb等于或大于測量方法的標準差,則應在每一時間點,取更多瓶RM進行測量,以減少不均勻性的影響。

6.6.2.3.11 由早(長)期穩定性引入的標準不確定度(Ults的計算

按公式(12)計算。

ults=S(b)×t   ………………………(12)

式中:

ults——由早(長)期穩定性引入的標準不確定度;

S(b) ——斜率的不確定度;

t——早期穩定性實驗的周期。

或者按公式(13)計算:

捕獲.PNG

式中:

ults——由早(長)期穩定性引入的標準不確定度;

yi——各時間點測量結果均值;

捕獲.PNG——各時間點測量結果均值的均值;

T——酶參考物質適用期

RSD——穩定性實驗的相對標準差

當由早(長)期穩定性引入的標準不確定度(ults)成為酶參考物質賦值擴展不確定度的主要組成分量時,如ults比其他任何一個組成分量不確定度還大30%,應考慮酶參考物質不穩定。

10.6.2.4 6.6.2.4 適用期的初步確定

若由早(長)期穩定性引入的標準不確定度ults仍在不確定度允許范圍內,可初步確定該酶參考物質的適用期為實驗的測量周期。

10.6.3 6.6.3 適用期內酶參考物質穩定性的監測

10.6.3.1 6.6.3.1 監測目的

6.6.3.1.1 通過對參考物質整個適用期間的實時監測,決定最終使用期或真正的失效期。

6.6.3.1.2 和早期穩定性實驗不同,監測實驗只說明證書提供的不確定度仍有效,一般沒有必要根據實時監測實驗結果重新計算不確定度。

6.6.3.1.3 如果監測結果達不到要求,說明此酶參考物質的賦值和(或)不確定度已有明顯變化,不在證書給出的不確定度范圍內,此時可有二個合理的選擇:

——取消該參考物質的證書;

——重新認證,重新賦值。

10.6.3.2 6.6.3.2 抽樣與樣本預處理

抽樣與樣本處理見6.6.2.1和6.6.2.2。

10.6.3.3 6.6.3.3 穩定性監測

6.6.3.3.1 監測周期:從標準物質生產到用完為止,大多可持續24個月~36個月。

6.6.3.3.2 監測模式:宜采用同步等時穩定性實驗模式。

6.6.3.3.3 測量頻數(時間點):宜根據參考物質穩定性情況,不少于5個監測時間點。

6.6.3.3.4 測量方法、校準方法、室內質控、樣本測量次數:參照6.6.2.3.3~6.6.2.3.6的步驟。

10.6.3.4 6.6.3.4 數據處理

6.6.3.4.1 測量數據有效性判斷

6.6.3.4.1.1 實驗批質控數據確認:按室內質控規則評價數據有效性。

6.6.3.4.1.2 離群值判斷標準:每瓶單次測量數據超出總均值±4SD。

6.6.3.4.1.3 數據剔除量:小于總測量數據量的5%。

6.6.3.4.2 數據分析

將每個時間點的測量均值與早期穩定性實驗中所得數據,進行趨勢分析。如無明顯變化趨勢,可認

為此酶參考物質可繼續使用。參照6.6.2.3.9.2的步驟進行。

10.6.3.5 6.6.3.5 監測結果評估

應明確監測結果只是要證實證書聲稱的不確定度UCRM無有意義的變化,而不是要改變它。

可按公式(14)進行判斷:

捕獲.PNG

式中:

xCRM——參考物質的賦值;

xmeas——某次監測該參考物質所得的量值;

k——含因子,一般取2,表明可信度為95%;

uCRM——酶參考物質的標準不確定度;

umeas——某次測量的標準不確定度。

注1:理想的情況是:進行監測實驗室所用測量方法的不確定度umeas應盡可能小,應小于uCRM。由于是在不同時期進行測量,如何讓重現性不精密度足夠小,使umeas小于uCRM通常較難。

注2:在對酶參考物質進行監測時,不能用被監測的參考物質來證實測量的有效性。不可能同時在一個實驗中核查兩件事。

10.6.4 6.6.4 短期穩定性實驗

10.6.4.1 6.6.4.1 抽樣

6.6.4.1.1 抽樣原則與抽樣方法

抽樣原則與抽樣方法分別見6.6.2.1.1和6.6.2.1.2。

6.6.4.1.2 抽樣量

6.6.4.1.2.1 均勻性實驗證實無明顯瓶間差的液態酶參考物質:每個時間點測量不少于2瓶。

6.6.4.1.2.2 冷凍干燥制品:每個時間點至少測量4瓶,最好為6~10瓶。

10.6.4.2 6.6.4.2 樣本預處理(同步等時穩定性實驗模式)

將樣本從生產者聲稱的貯存條件中取出,做好標記,放入特定貯存條件(如液氮-150℃)中貯存。

10.6.4.3 6.6.4.3 測量

6.6.4.3.1 測量周期,不少于4d。

6.6.4.3.2 測量頻數(時間點):不少于3個時間點。

6.6.4.3.3 測量方法、校準方法、室內質控、樣本測量次數:參照6.6.2.3.3~6.6.2.3.6的步驟。

10.6.4.4 6.6.4.4 數據處理

參照早期穩定性實驗的數據處理方法,計算各點測量數據的斜率和切距。用統計學方法計算是否在有顯著意義的變化趨勢。若不存在明顯變化,可認為短期穩定性的不確定度usts為零。

注:在進行短期穩定性實驗時,應注意對酶參考物質互換性的影響,有可能參考物質中酶含量無顯著變化,但酶的結構出現變化,從而影響了酶參考物質的互換性。此時有必要追加酶參考物質在運輸后的互換性的驗證實驗。

10.7 6.7 網絡聯合定值

10.7.1 6.7.1 設計

10.7.1.1 6.7.1.1 預期目標

實驗室間測量允許變異范圍:測量總均值±5.0%;實驗室內測量變異≤2.0%。

10.7.1.2 6.7.1.2 定值實驗室數目

依據所采用方法的復雜程度和成熟程度由參考物質生產者或委托權威機構制定。

10.7.1.3 6.7.1.3 參加網絡定值實驗室的要求和資格

6.7.1.3.1 應能運行JCTLM或我國批準的參考方法。

6.7.1.3.2 參考方法測量結果應能溯源至JCTLM或我國批準的參考物質。

6.7.1.3.3 實驗室應參加IFCC組織的國際參考實驗室或我國酶學參考實驗室室間質量評價,測量結果應合格。

10.7.1.4 6.7.1.4 網絡聯合定值方法的選擇

JCTLM或我國批準的參考方法。

10.7.1.5 6.7.1.5 樣本的運輸、接收和貯存

嚴格按照參考物質生產者提供的有關參考物質運輸條件、貯存條件說明進行。

10.7.1.6 6.7.1.6 測量日數、每日測量瓶數、每瓶重復測量次數

應至少測量2日,每日測量1—3瓶,每瓶樣本至少重復測量3次。

10.7.1.7 6.7.1.7 各參考實驗室測量數據的收集

各參考實驗室將測量數據填入由組織者設計并發放的數據處理表中,并在規定時間內回報給組織者。

10.7.1.8 6.7.1.8 各參考實驗室測量數據的評估,即離群值的剔除

利用統計學方法對無效的實驗室數據和離群值進行剔除。

10.7.1.9 6.7.1.9 網絡聯合定值結果的計算

6.7.1.9.1 網絡聯合定值均值的計算

6.7.1.9.1.1 數據分布規則時,網絡聯合定值均值等于有效實驗室測量結果均值的數學均值。

6.7.1.9.1.2 數據分布不規則時,應采用相關統計方法,如取中值或修飾均值作為最終的均值。

注:當滿足下列兩個假設時按6.7.1.9.1.1的方法計算:

——各參考實驗室給參考物質的賦值都具有可接受的準確性;

——實驗室的每個測量結果的差異僅限于統計學范疇。

6.7.1.9.2 網絡聯合定值(測量)不確定度的計算

按公式(15)計算。

捕獲.PNG

式中:

uchar——定值標準不確定度;

SDchar——每個實驗室測量均值的標準差;n——有效的網絡實驗室的數目。

或按公式(16)計算。

捕獲.PNG

式中:

uchar——定值的標準不確定度;

SL——實驗室間標準差,按公式

捕獲.PNG

計算。其中.MSamong:組間方差;MSwithin

組內方差;

Sr——實驗室內標準差,按公式(3)計算;

n——有效的網絡實驗室的數目;

n0——每個實驗室測量次數。

10.7.2 6.7.2 定值

10.7.2.1 6.7.2.1 確定參加網絡實驗室的數目

6.7.2.1.1 與測量方法和程序有關:若方法和程序復雜,實驗室數目宜增加。

6.7.2.1.2 測量方法成熟:2~3個。

注:常見于用原級參考方法對有基質效應的參考物質的賦值。指由一個參考實驗室賦值,由其他1~2個參考實驗室驗證。

6.7.2.1.3 方法和程序復雜,但每個參加實驗室的結果在計量學和技術上均有效:5~8個。

6.7.2.1.4 如不可避免地出現某些參考實驗室的結果在統計學上或技術上無法接受:至少10個,最好15個。

10.7.2.2 6.7.2.2 樣本發放

6.7.2.2.1 發放量:每個實驗室應至少3瓶。

6.7.2.2.2 運輸條件:按照短期穩定性實驗確定的條件運輸。

10.7.2.3 6.7.2.3 測量

6.7.2.3.1 測量周期

測量周期應不少于2d。

6.7.2.3.2 測量方法

JCTLM或我國批準的參考方法。

6.7.2.3.3 室內質控

樣本測量前后應分別進行室內質控樣本測量。如出現室內質控失控或其他操作問題,則應將此批次數據棄去,另加一個批次測量。

6.7.2.3.4 每日測量瓶數

每日測量至少一瓶。

6.7.2.3.5 每瓶樣本測量次數

每瓶樣本至少重復測量3次。

10.7.2.4 6.7.2.4 數據處理(實例參見附錄C)

6.7.2.4.1 組織者收集網絡中各實驗室回報的測量結果

每個參加實驗室應將測量結果統一填入組織者發放的結果回報表中,并在規定期限內回報給組織者。結果回報表可參考表5~表7設計。

表5 測量方法正確度驗證表

實驗室編號   實驗室名稱____

測量方法____   參考物質生產者____

參考物質名稱____   分析物名稱____

正確度驗證

用標準物質

結果1

U/L

結果2

U/L

結果3

U/L

結果4

U/L

結果5

U/L

結果6

U/L

均值

U/L

標準差

U/L

CV

%

CRM

表6 測量期間室內質控表

實驗室編號__________實驗室名稱___________

測量方法___________參考物質生產者__________________

參考物質名稱___________分析物名稱___________

第1日室內質控

第2日室內質控

項目

測量前

測量后

測量前

測量后

第一次U/L

第二次U/L

均值U/L

標準差U/L

CV%

當日均值U/L

當日標準差U/L

當日CV%

表7 參考物質測量結果表

實驗室編號__________實驗室名稱__________

測量方法__________參考物質生產者__________

參考物質名稱__________分析物名稱__________

第1日

第2日

結果1/U/L

結果2/U/L

結果3/U/L

結果4/U/L

結果5/U/L

當日均值/U/L

當日標準差/U/L

當日CV%

兩日均值

兩日標準差

兩日CV/%

擴展不確定度(k=2)

10.7.2.5 6.7.2.4.2 單一實驗室測量數據有效性判斷

6.7.2.4.2.1 實驗日質控數據確認:按室內質控規則評價數據有效性。

6.7.2.4.2.2 離群值判斷標準:每瓶單次測量數據超出總均值±4SD。

6.7.2.4.2.3 數據剔除量:小于總測量數據量的5%。

10.7.2.6 6.7.2.4.3 各實驗室有效測量結果匯總

匯總表可參考表8設計。

表8 實驗室參考物質有效測量結果匯總表

測量方法__________參考物質生產者__________

參考物質名稱__________分析物名稱__________

實驗室1

實驗室2

實驗室3

實驗室na

單一實驗室均值/(U/L)

總均值/(U/L)

總標準差/(U/L)

總CV%

a所有實驗室數目。

10.7.2.7 6.7.2.4.4 各實驗室均值的分布圖

通常組織良好的實驗室網絡的數據結果呈正態分布。數據分布情況對參考物質賦值和不確定度的評定影響較小,若數據不是明顯偏態,可直接應用。若出現二個甚至更多的群(clusters)(峰),應根據出現的原因重新設計賦值方案并賦值。

10.7.2.8 6.7.2.4.5 無效實驗室剔除標準

6.7.2.4.5.1 單一實驗室結果的變異系數明顯比其他實驗室大,超出組織者規定的允許范圍。

6.7.2.4.5.2 單一實驗室的結果明顯不同于其他實驗室。若單一實驗室測量均值超出所有實驗室總均值±4SD,該實驗室的所有結果剔除。

6.7.2.4.5.3 兼有6.7.2.4.5.1和6.7.2.4.5.2兩種情況的實驗室。

注:本標準建議可按照IFCC RELA計劃提出的標準(單一實驗室均值偏離總均值±5%左右)或單一實驗室測量變異系數>2%時,在計算賦值和不確定度時,可將這些實驗室剔除。此標準低于美國CDC膽固醇測量網絡實驗室標準(偏倚≤1%,變異系數≤1%)。

10.7.2.9 6.7.2.4.6 有效數據處理

6.7.2.4.6.1 實驗室網絡聯合定值結果(xchar)按公式(17)計算。

捕獲.PNG

式中:

xchar——實驗室網絡聯合定值結果的均值;   n——有效的網絡實驗室數目;

捕獲.PNG——單一實驗室測量均值。

6.7.2.4.6.2 定值的標準不確定度(uchar)按公式(18)計算。

捕獲.PNG

式中:

uchar——定值的標準不確定度;

SDchar——實驗室網絡聯合定值結果的標準差;

n——有效的網絡實驗室的數目。

或按公式(19)計算。

捕獲.PNG

式中:

uchar——定值的標準不確定度;

SL——實驗室間標準差;

MSamong——組間方差;

MSwithin——組內方差;

Sr——實驗室內標準差,按公式(3)計算;

n——有效的網絡實驗室的數目;

n0——每個實驗室測量次數。

10.8 6.8 參考物質賦值不確定度的評定

10.8.1 6.8.1 不確定度主要分量來源

不確定度主要分量來源有:

——由瓶間均勻性引入的不確定度;

——由早(長)期穩定性引入的不確定度;

——由短期穩定性引入的不確定度;

——由網絡聯合定值引入的不確定度。

10.8.2 6.8.2 不確定度分量計算

6.8.2.1 由瓶間均勻性引入的相對標準不確定度:urel(bb)

urel(bb)按公式(20)計算。

捕獲.PNG

式中:

urel(bb)——由瓶間均勻性引入的相對標準不確定度;

xbb——均勻性實驗測量結果的均值;

MSamong——組間方差;

MSwithin——組內方差;

n0——每瓶測量次數。

6.8.2.2 由早(長)期穩定性引入的相對標準不確定度:urel(lts)

urel(lts)按公式(21)計算。

捕獲.PNG

式中:

ults——由早(長)期穩定性引入的相對標準不確定度;xlts——早期穩定性實驗測量結果的均值;

S(b) ——斜率的不確定度;

t——早期穩定性實驗的周期。或者按公式(22)計算。

捕獲.PNG

式中:

ults——由早(長)期穩定性引入的相對標準不確定度;

xlts——早期穩定性實驗測量結果的均值;

yi——各時間點測量結果均值;

捕獲.PNG——各時間點測量結果均值的均值;

T——酶參考物質適用期;

RSD——穩定性實驗的相對標準差。

6.8.2.3 由短期穩定性引入的相對標準不確定度:urel(sts)

urel(sts)按公式(23)計算。

捕獲.PNG

式中:

Usts——由短期穩定性引入的相對標準不確定度;

xsts——短穩定性實驗測量結果的均值;

S(b)——斜率的不確定度;

tsts——短期穩定性實驗的周期。或者按公式(24)計算。

捕獲.PNG

式中:

usts——由短期穩定性引入的相對標準不確定度;

xsts——短期穩定性實驗測量結果的均值;

yi——各時間點測量結果均值;

捕獲.PNG——各時間點測量結果均值的均值;

Tsts——酶參考物質適用期

RSD——穩定性實驗的相對標準差。

6.8.2.4 定值的相對標準不確定度:urel(char)

urel(char)按公式(25)計算。

捕獲.PNG

式中:

urel(char)——定值的相對標準不確定度;

xchar——實驗室網絡聯合定值結果的均值;SDchar——實驗室網絡聯合定值結果的標準差;n——網絡實驗室的數目。

或按公式(26)計算:

捕獲.PNG

式中:

urel(char)——定值的相對標準不確定度;

xchar——實驗室網絡聯合定值結果的均值;

SDchar——實驗室網絡聯合定值結果的標準差;

SL——實驗室間標準差,按公式

捕獲.PNG

計算。其中.MSamong為組間方差;

MSwithin:組內方差;

Sr——實驗室內標準差,按公式(3)計算;

n——有效的網絡實驗室的數目;

no——每個實驗室測量次數。

10.8.3 6.8.3 相對合成標準不確定度[urel(CRM)]的計算

urel(CRM)按公式(27)計算:

捕獲.PNG

式中:

urel(bb)——由瓶間均勻性引入的相對標準不確定度;

urel(lts)——由早(長)期穩定性引入的相對標準不確定度;

urel(sts)——由短期穩定性引入的相對標準不確定度;

urel(char)——定值的相對標準不確定度。

10.8.4 6.8.4 擴展不確定度(UCRM)的計算

6.8.4.1 包含因子(置信區間的選擇)

6.8.4.1.1 通常根據數據分布特性和置信水平(一般取95%)進行選擇。如果數據是正態分布,宜取包含因子k=2;如果數據非正態分布,則應說明其置信區間。

6.8.4.1.2 當自由度(有效)值低時,也可以Student t-分布取代指定包含因子。

6.8.4.2 擴展不確定度(UCRM

UCRM按公式(28)計算:

UCRM=k×urel(CRM)×xchar  …………………………(28)

式中:

k一包含因子,一般取k=2;

urel(CRM)——相對合成標準不確定度;

xchar——實驗室網絡聯合定值結果的均值。

10.9 6.9 賦值報告

10.9.1 6.9.1 完成者

由組織者指定實驗室完成。

10.9.2 6.9.2 結果表達方式

6.9.2.1 參考物質的賦值xCRM用(29)式表示。

xCRM=xchar±UCRM   ……(29)

式中:

xCRM——酶參考物質的賦值;

xchar——實驗室網絡聯合定值結果的均值;

UCRM——賦值的擴展不確定度。

6.9.2.2 結果應注明包含因子或置信區間。

11 附錄A(資料性附錄)瓶間均勻性實驗有效數據處理實例

11.1 A.1 實例簡述

本例中采用隨機抽樣原則,抽樣20瓶,每瓶測量2次。

11.2 A.2 數據錄入

將有效數據填入表A.1。

表A.1 瓶間均勻性實驗測量數據

瓶號

結果1

U/L

結果2

U/L

1

241.2

240.9

2

238.6

239.1

3

241.5

240.0

4

241.3

243.1

3

241.9

241.9

6

238.8

241.5

7

238.3

242.7

8

237.1

239.8

9

240.4

241.4

10

239.1

242.1

11

239.1

239.6

12

237.4

239.1

13

238.0

241.8

14

238.5

242.4

15

237.2

238.4

16

239.1

240.9

17

238.7

239.5

18

237.5

239.9

19

237.4

239.6

20

238.0

238.7

11.3 A.3 由瓶間均勻性引入的標準不確定度(ubb)的計算

A.3.1 對表A.1數據進行計算

求出每瓶二次測量的平均值、方差,見表A.2:

表A.2 每瓶測量結果的均值、方差和測量次數

瓶號

均值

U/L

方差

測量次數

1

241.1

0.04

2

2

238.9

0.13

2

3

240.8

1.13

2

4

242.2

1.62

2

5

241.9

0.00

2

6

240.2

3.65

2

7

240.5

9.68

2

8

238.5

3.65

2

9

240.9

0.50

2

10

240.6

4.50

2

11

239.4

0.13

2

12

238.3

1.45

2

13

239.9

7.22

2

14

240.5

7.61

2

15

237.8

0.72

2

16

240.0

1.62

2

17

239.1

0.32

2

18

238.7

2.88

2

19

238.5

2.42

2

20

238.4

0.25

2

A.3.2 計算組間方差MSamong和組內方差MSwithin

從表A.2計算出組閭方差和組內方差見表A.3。

表A.3 瓶間均勻性實驗的ANOVA表

變異來源

SS

自由度

MS

瓶間變異

60.8

19

3.20

瓶內變異

49.5

20

2.48

總變異

110.3

39

A.3.3 瓶間均勻性的標準差(Sbb)和復現性標準差(Sr

A.3.3.1 瓶間均勻性的標準差(Sbb

按公式(2)計算:

捕獲.PNG

A.3.3.2 重復性標準差(Sr)   按公式(3)計算:

捕獲.PNG

A.3.4 由瓶間均勻性引入的標準不確定度(ubb

按公式(4)計算:ubb=Sbb=0.6(U/L)

12 附錄B(資料性附錄)早期穩定性實驗有效數據處理實例

12.1 B.1 實例簡述

為某CK參考物質早期穩定性實驗。共測量6個月,7個時間點。

12.2 B.2 數據錄入

將有效數據填入表B.1。

表B.1 早期穩定性實驗數據

12.3 B.3 斜率不確定度的評定

B.3.1 根據公式(8)計算上述數據斜率(b)。

捕獲.PNG

B.3.2 按公式(9)計算截距(a)。

捕獲.PNG

B.3.3 按公式(10)計算直線上各點的標準差(S)。

捕獲.PNG

B.3.4 按公式(11)計算斜率的不確定度(S(b))。

捕獲.PNG

12.4 B.4 結果判斷

|b|=0.1

查表得:

t(0.05,n-2)=t(095,5)=2.571

t(0.05,n-2)×S(b)=0.797(U/L)

由|b|<t(0.05,n-2)×S(b)可判斷斜率穩定。

12.5 B.5 由早(長)期穩定性引入的標準不確定度(ults)

按公式(12)計算:

ults=S(b)×t=0.31×6=1.86 U/L

12.6 B.6 適用期的初步確定

由早(長)期穩定性引入的標準不確定度ults=1.86 U/L,與參考物質酶活性245.5 U/L相比,仍在不確定度允許范圍內,初步暫定其適用期為6個月。

13 附錄C(資料性附錄)酶參考物質賦值計算及不確定度評定實例

13.1 C.1 實例簡述

國際臨床化學聯合會(IFCC) 2002年組織對歐洲標準局(IRMM)酶參考物質ERM中γ-谷氨酰基轉移酶(GGT)賦值結果及不確定度計算。

13.2 C.2 賦值方案

C.2.1 樣本準備:組織者給參加實驗室運送7瓶冷凍干燥的酶參考物質以及質控品。

C.2.2 相關文件準備:組織者給參加實驗室酶提供《參考物質復溶程序》、《GGT的標準操作程序(SOP)》以及測量結果回報表等文件。

C.2.3 實驗周期、測量瓶數、每瓶測量次數:共測量2日,每日復溶3瓶,在復溶當日每瓶測量一次。C.2.4 測量方法:IFCC在2002年批準的37℃標準測量方法。

C.2.5 測量結果回報:將測量結果在規定時間內回報給IFCC。

13.3 C.3 數據處理

13.3.1 C.3.1 數據篩查與分析

IFCC對數據進行出篩和分析,剔除了13個實驗室中1個實驗室數據。表C.1為12個合格實驗室原始數據:

表C.1 IFCC實驗室網絡對ERM中GGT賦值的數據

實驗室

實驗結果

IU/L

均值

IU/L

SD

IU/L

RSD

IU/L

Lab01

118.1

118.9

119.0

118.1

118.1

119.2

118.6

0.5

0.4

Lab04

112.6

112.6

110.6

114.0

114.0

114.0

113.O

1.3

1.2

Lab05

111.9

113.7

110.3

112.4

113.0

11.9

112.0

1.3

1.1

Lab07

111.1

111.4

115.1

109.3

111.0

109.7

111.3

2.1

1.8

Lab08

113.0

115.0

112.6

112.6

113.7

113.1

113.3

0.9

0.8

Lab09

113.3

112.4

113.8

110.2

112.5

114.4

112.8

1.5

1.3

Lab10

114.0

115.3

114.9

113.7

114.3

112.8

114.2

0.9

0.8

Lab11

116.8

116.9

117.4

116.7

117.0

116.6

116.9

0.3

0.2

Lab13

112.6

113.0

113.7

111.7

113.6

111.0

112.6

1.1

1.0

Lab14

114.9

115.5

114.5

115.7

115.5

115.4

115.3

0.5

0.4

Lab15

117.1

118.6

117.9

116.4

117.7

118.4

117.7

0.8

0.7

Lab16

113.9

112.5

111.0

111.1

110.8

112.4

112.0

1.2

1.1

All Labs

114.12

2.43

2.1

檢查表C.1中的數據分布:這些數據沒有嚴重偏離正態分布。

13.3.2 C.3.2 酶參考物質賦值的計算

賦值是根據上述數據計算出來的未經過權重的均值,即:

按公式(17)計算網絡聯合定值結果的均值(xchar)。

捕獲.PNG

13.3.3 C.3.3 酶參考物質測量不確定度的評定

C.3.3.1 使用one-way ANOVA分析數據,得表C.2

表C.2 IFCC實驗室網絡對ERM中GGT賦值的one-way ANOVA分析數據

變異的來源

SS

自由度

MS

組間變異

388.64

11

35.33

組內變異

76.45

60

1.27

總變異

465.09

71

C.3.3.2 測量標準不確定度(uchar)的計算

C.3.3.2.1 按公式(18)計算:

捕獲.PNG

C.3.3.2.2 或者按公式(19)計算:

捕獲.PNG

C.3.3.3 定值的相對標準不確定度[urel(char)]的計算

按公式(25)計算:

捕獲.PNG

C.3.3.4 相對合成標準不確定度(urel(CRM))的計算

按公式(27)計算:

捕獲.PNG

C.3.3.5 擴展不確定度的計算

按公式(28)計算:

UCRM=k×urel(CRM)×xchar=2×1.035%×114.1=2.4U/L

13.4 C.4 IRMM酶參考物質ERM中GGT賦值結果

xCRM=xchar±UCRM=114.1+2.4U/L(k=2)

14 參考文獻

[1] ISO Guide 35:2006 參考物質一定值的一般和統計原則

[2] IS015194:2002 體外診斷醫學器械——生物源樣品中量的測量——參考物質的說明

[3] Schumann G,Borona R,Ceriotti F,Ferard G,Ferrero CA,Franck PFH,et al.IFCC Primary Reference Procedures for the Measurement of Catalytic Activity Concentration of Enzymes at 37℃.Part 7.Certification of Four Reference Materials for the Determination of γ-Glutamyltransferase,Lactate Dehydrogenase,Alanine Aminotransferase and Creatine Kinase according to IFCC Reference Procedures at 37℃.Clin Chem Lab Med 2002,40(7):739-745

[4] ISO.In Vitro diagnostic medical devices—Measurement of quantities in biological samples Metrological traceability of values assigned to calibrators and control materials. IS017511. Geneva:International Organization for Standardization; 2003

[5] ISO.In Vitro diagnostic medical devices—Measurement of quantities in biological samples Metrological traceability of values assigned to catalytic concentration of enzymes in calibrators and control materials. IS018153. Geneva:International Organization for Stand—Standardization; 2003

[6] Guide to the of uncertainty in measurement. BIPM;IEC,IFCC;ISO;IUPAC;IU-PAP,OIML,1993 1)

[7] Quantifing Uncertainty in Analytical Measurement—Secodn Edition. EURACHE/CITAC Guide CG4

[8] EPo-A2 Evaluation of Precision Performance of Quantitative Measurement Methods; Approved Guideline—Second Edition

[9] EP14-A2 Evaluation of matrix effect. Wayne,PA:National Committee for Clinical Laboratory Standards.2000

[10] ISO/IEC Guide 99 International vocabulary of metrology—Basic and general concepts and associated terms(VIM) ,1993

[11] European Commission,“Guidelines for the production and certification of BCR reference materials—Part A: Guide to proposers of reference materials projects”, Doc. BCR/01/97, Brussels(B),1 September 1997

[12] European Commission,“Guidelines for the production and certification of BCR reference materials”,Doc. BCR/48/93.Brussels(B),15 December 1994

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